1. Blocken mit 5% Magermilch / 1x PBS def.-0,1% Tween 20: 30 min schütteln lassen
2. Waschen: 2x 2 min PBS def./0,1% Tween 20
3. Inkubation mit 1. Antikörper: monocl. anti-c-myc 1:200 in PBS def./0,1% Tween 20
2 Stunden bei Raumtemperatur oder über Nacht bei 4 ° C inkubieren
4. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
5. Inkubation mit 2. Antikörper: anti-mouse-Ig-HRP 1:5000 (Amersham NA 931,
Batch 133232 ) in PBS def./0,1% Tween 20: 1 Stunde bei R.T.
6. Waschen: 3x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit PBS def./0,1% Tween 20
7. Detektion mit dem Pierce SuperSignal Reagenz: 125 µl/cm2 Blot , 2 Lösungen im
Verhältnis 1:1 gemischt: 5 min inkubieren
8. Exponieren auf Film, bzw. Detektion am LumiImager
Polyklonaler Anti-c-myc Tag 409-420(cat#06-549/Lot#14966)
1. Blocken mit 5% Magermilch / 1x PBS def.-0,1% Tween 20: 30 min schütteln lassen
2. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
3. Inkubation mit 1. Antikörper: polykl. anti-c-myc 1:1000 in 1x PBS def./0,1% Tween
20, 1 Stunde bei Raumtemperatur oder über Nacht bei 4 ° C inkubieren
4. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
5. Inkubation mit 2. Antikörper: anti-rabbit-Ig-HRP 1:5000 (Amersham NA 934,
Batch 103 ) in 1x PBS def./0,1% Tween 20: 1 Stunde bei R.T.
6. Waschen: 3x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
7. Detektion mit dem Pierce SuperSignal Reagenz: 125 µl/cm2 Blot , 2 Lösungen im
Verhältnis 1:1 gemischt: 5 min inkubieren
8. Exponieren auf Film, bzw. Detektion am LumiImager
1. Blocken mit 5% Magermilch / 1x PBS def.-0,1% Tween 20: 30 min schütteln lassen Johannes A. Schmid
2. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
3. Inkubation mit 1. Antikörper: anti-X-Press 1:5000 in 0,1% BSA /1x PBS def./0,1%
Tween 20, 1 Stunde bei Raumtemperatur oder über Nacht bei 4 ° C inkubieren
4. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
5. Inkubation mit 2. Antikörper: anti-mouse-Ig-HRP 1:5000 (Amersham NA 931,
Batch 133232 ) in 1x PBS def./0,1% Tween 20: 1 Stunde bei R.T.
6. Waschen: 3x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
7. Detektion mit dem Pierce SuperSignal Reagenz: 125 µl/cm2
Blot , 2 Lösungen im
Verhältnis 1:1 gemischt: 5 min inkubieren, Exponieren auf Film, bzw. Detektion am
LumiImager
Monoklonaler Anti-P-Tag (H902-ascites)
1. Blocken mit 2% Magermilch / 1x PBS def.-0,05% Tween 20: 30 min schütteln lassen
2. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,05% Tween 20
3. Inkubation mit 1. Antikörper: monocl. anti-P-Tag 1:2000 in 0,2% Trockenmilch/1x
PBS def./0,05% Tween 20
über Nacht bei 4 ° C inkubieren (1:1000 verdünnen, wenn man 1 Std. bei RT
inkubiert)
4. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,05% Tween 20
5. Inkubation mit 2. Antikörper: anti-mouse-Ig-HRP 1:5000 (Amersham NA 931,
Batch 133232 ) in 1x PBS def./0,05% Tween 20: 1 Stunde bei R.T.
6. Waschen: 3x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,05% Tween 20
7. Detektion mit dem Pierce SuperSignal Reagenz: 125 µl/cm2Blot , 2 Lösungen im
Verhältnis 1:1 gemischt: 5 min inkubieren
8. Exponieren auf Film, bzw. Detektion am LumiImager
1. Blocken mit 5% Magermilch / 1x PBS def.-0,1% Tween 20: 30 min schütteln lassen Johannes A. Schmid
2. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
3. Inkubation mit 1. Antikörper: polykl. anti-Flag 1:1000 in 1x PBS def./0,1% Tween
20
1 Stunde bei Raumtemperatur oder über Nacht bei 4 ° C inkubieren
4. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
5. Inkubation mit 2. Antikörper: anti-rabbit-Ig-HRP 1:5000 (Amersham NA 934,
Batch 103 ) in 1x PBS def./0,1% Tween 20: 1 Stunde bei R.T.
6. Waschen: 3x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
7. Detektion mit dem Pierce SuperSignal Reagenz: 125 µl/cm2Blot , 2 Lösungen im
Verhältnis 1:1 gemischt: 5 min inkubieren
8. Exponieren auf Film,
bzw. Detektion am LumiImager
1. Blocken mit 5% Magermilch/50 mM Tris(50 ml 1 M Tris bei 1l)+ 200 mM NaCl(40
ml
5 M NaCl)+ 2 mM CaCl 2 (2 ml 2 M CaCl 2 ) 1 Stunde schütteln lassen
2. Waschen: 3x kurz 50 mM Tris(50 ml 1 M Tris bei 1l)+ 200 mM NaCl(40 ml 5 M
NaCl)+ 2 mM CaCl 2 (2 ml 2 M CaCl 2 )
3. Inkubation mit 1. Antikörper: monocl. M1 anti-Flag 1:500 in 50 mM Tris(50 ml 1 M
Tris bei 1l)+ 200 mM NaCl(40 ml 5 M NaCl)+ 2 mM CaCl 2 (2 ml 2 M CaCl 2 )
Inkubation 1 Stunde bei R.T.
4. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 50 mM Tris(50 ml 1 M Tris bei 1l)+
200 mM NaCl(40 ml 5 M NaCl)+ 2 mM CaCl 2 (2 ml 2 M CaCl 2 )
5. Inkubation mit 2. Antikörper: anti-mouse-Ig-HRP 1:5000 (Amersham NA 931,
Batch 133232 ) in 50 mM Tris(50 ml 1 M Tris bei 1l)+ 200 mM NaCl(40 ml 5 M
NaCl)+ 2 mM CaCl 2 (2 ml 2 M CaCl 2 ) 1 Stunde bei R.T.
6. Waschen: 3x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 50 mM Tris(50 ml 1 M Tris bei 1l)+
200 mM NaCl(40 ml 5 M NaCl)+ 2 mM CaCl 2 (2 ml 2 M CaCl 2 ) Johannes A. Schmid
7. Detektion mit dem Pierce SuperSignal Reagenz: 125 µl/cm2 Blot , 2 Lösungen im
Verhältnis 1:1 gemischt: 5 min inkubieren, Exponieren auf Film, bzw. Detektion am
LumiImager
1. Blocken mit 5% Magermilch / 1x PBS def.-0,1% Tween 20: 30 min schütteln lassen
2. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
3. Inkubation mit 1. Antikörper: polykl. anti-IKB- α 1:500 in 1x PBS def./0,1% Tween
20, 1 Stunde bei Raumtemperatur oder über Nacht bei 4 ° C inkubieren
4. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
5. Inkubation mit 2. Antikörper: anti-rabbit-Ig-HRP 1:5000 (Amersham NA 934,
Batch 103 ) in 1x PBS def./0,1% Tween 20: 1 Stunde bei R.T.
6. Waschen: 3x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
7. Detektion mit dem Pierce SuperSignal Reagenz: 125 µl/cm2 Blot , 2 Lösungen im
Verhältnis 1:1 gemischt: 5 min inkubieren
8. Exponieren auf Film, bzw. Detektion am LumiImager
1. Blocken mit 5% Magermilch / 1x PBS def.-0,05% Tween 20: 30 min schütteln lassen
2. Inkubation mit 1. Antikörper: polykl.cl. anti-Traf 1/2 1:500 in 5% Magermilch/1x
PBS def./0,05% Tween 20, 1 Stunde bei Raumtemperatur oder über Nacht bei 4 ° C
inkubieren
3. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,05% Tween 20
4. Inkubation mit 2. Antikörper: anti-rabbit-Ig-HRP 1:5000 (Amersham NA 934,
Batch 103 ) in 1x PBS def./0,05% Tween 20: 1 Stunde bei R.T.
5. Waschen: 3x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,05% Tween 20
6. Detektion mit dem Pierce SuperSignal Reagenz: 125 µl/cm2 Blot , 2 Lösungen im
Verhältnis 1:1 gemischt: 5 min inkubieren Johannes A. Schmid
1. Blocken mit 1% BSA / 50 mM Tris/ 200 mM NaCl/ 0,1% Tween 20: 1 Stunde
schütteln
2. Inkubation mit 1. Antikörper: anti-HA-HRP 1:1000 in 1% BSA / 50 mM Tris/ 200
mM NaCl/ 0,1% Tween 20, 2 Stunden bei Raumtemperatur oder über Nacht bei 4 ° C
inkub.
3. Waschen: 3x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 50 mM Tris/ 200 mM NaCl/
0,1% Tween 20
4. Detektion mit dem Pierce SuperSignal Reagenz: 125 µl/cm2 Blot , 2 Lösungen im
Verhältnis 1:1 gemischt: 5 min inkubieren
5. Exponieren auf Film, bzw. Detektion am LumiImager
1. Block: 5% dry milk in TBS
2. Wash 2x 5 min with TBS/0.05% Tween-20 (TBS/T)
3. Antibody: anti-myc-HRP (1:2000 in blocking buffer): 2 h at r.t. or over night at 4°C
4. Wash 2x 5 min with TBS/T
5. Wash once for 5 min with TBS
6. Detection with Pierce SuperSignal or equivalent
1. Block: 30 min with 5% dry milk in TBS (or PBS)
2. Wash briefly with TBS
3. 1st antibody: anti-TAK1 (1:500 or 1:1000 in TBS): 1 h at r.t. or over night at 4°C
4. Wash 3 x 5 min with TBS/0.05% Tween-20
5. 2nd antibody: anti-rabbit-Ig-HRP 1:5000 in TBS/T (Amersham NA 934): 1 h at r.t.
6. Wash 3 x 5 min with TBS/0.05% Tween-20
7. Detection with Pierce SuperSignal or equivalent
1. Block with 5% dry milk in TBS (1 h at 37°C)
2. Wash 2x 2 min with TBS
3. 1st antibody: anti-flag M2 (1:1000 in TBS or in blocking buffer): 30 min – 1 h at r.t.
4. Wash 3x 2 min with TBS
5. 2nd antibody: anti-mouse-Ig-HRP (1:5000 in TBS or blocking b., Amersham NA931)
30 min – 1 h at r.t.
6. Wash 3x 15 min with TBS
7. Detection with Pierce SuperSignal …
1. Blocken mit 5% Magermilch / 1x PBS def.-0,1% Tween 20: 30 min schütteln lassen
2. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
3. Inkubation mit 1. Antikörper: polykl. anti-GFP 1:1000 in 1x PBS def./0,1% Tween-
20 , 1 Stunde bei Raumtemperatur oder über Nacht bei 4 ° C inkubieren
4. Waschen: 2x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
5. Inkubation mit 2. Antikörper: anti-rabbit-Ig-HRP 1:5000 (Amersham NA 934,
Batch 103 ) in 1x PBS def./0,1% Tween 20: 1 Stunde bei R.T.
6. Waschen: 3x kurz, 1x 15 min und 2x 5 min mit 1x PBS def./0,1% Tween 20
7. Detektion mit dem Pierce SuperSignal Reagenz: 125 µl/cm2 Blot , 2 Lösungen im
Verhältnis 1:1 gemischt: 5 min inkubieren
Exponieren auf Film, bzw. Detektion am LumiImager
1. Block: 3% milk in PBS/0.1%Tween 20 (PBS/T): 30 min
2. 1st antibody (New England Biolab, Diana Mechtcheriakova) 1:1000 in Block: 1 h at RT
3. Wash: 3x 5 min in PBS/T
4. 2nd antibody: anti-rabbit Ig-HRP 1: 2500 (Amersham): 1 h at r.t.
5. Wash: 3x 5 min in PBS/T
6. Detection with Pierce SuperSignal or equivalent